Vierkernige Clusterkomplexe vom Typ [MM'(AuPR3)2(l-H)(l-PCy2)(l4-PCy)(CO)6]
cm±1 (434 nm) = 2.55 ´ 106 L mol±1 cm±1 1H-NMR (CDCl3): ±15.3 (pseu-
.
1H- und 31P-NMR-LoÈsungsspektren wurden mit einem
Bruker AMX 300 Spektrometer (Standard: TMS bzw. 85%
H3PO4) bei Angabe der Messwerte fuÈr die chemische Ver-
schiebung (ppm) und Kopplungen (Hz) aufgenommen. IR-
Spektren wurden mit einem Nicolet FTIR P510 gemessen.
Die Elementaranalysen (C,H) stimmen mit den angegebe-
nen Formeln uÈberein.
In Analogie zur Literaturvorschrift erfolgte die Darstel-
lung der Komplexe ClAuPR3 (R = Ph, Cy, Et) [11±12] und
der Zweikernkomplexe [MM'(l-H)(l-PCy2)(CO)8] (M =
M' = Re, Mn, M = Mn, M' = Re) [13±15].
do-t; 2JPH = 30 Hz, 1 H, l-H); 1.3 ±2.1 (m, 33 H, Cy); 4.8 (d, 1JPH = 323 Hz,
1 H, H2PCy). 31P-NMR (CDCl3): ±2.7 (s, 1 P, H2PCy), 193.0 (s, 1 P,
1
l-PCy2); 31P{1 H}-NMR: ±2.7 (t, JPH = 323 Hz, 1 P, H2PCy); 193.0 (s, 1 P,
l-PCy2).
9 C25H36O7P2ReMn (Mr = 751.75): m(CO)-IR(THF): 2081 m, 2066 sh,
2015 s, 1982 s, 1943 s, 1921 vs. m(CO)-IR (CH2Cl2): 2082 w, 2073 w, 2025 m,
2015 m, 1998 vs, 1943 vs, 1913 vs (breit). 1H-NMR (CDCl3): ax-Isomer
2
±15.56 (pseudo-t; JPH = 19.1 Hz, 1 H, l-H); 0.9±2.2 (m, 33 H, Cy); 3.63
1
3
(dd, JPH = 311 Hz, JPH = 3.4 Hz, 2 H, H2PCy). aÈq-Isomer: ±16.12 (dd;
2JPH = 28.4 Hz, 16 Hz, 1 H, l-H); 0.9±2.2 (m, 33 H, Cy): 4.85 (dd,
1JPH = 325 Hz, JPH = 5.3 Hz, 2 H, H2PCy). 31P-NMR (CDCl3): ax-Isomer
3
±4.4 (s, 1 P, H2PCy); 118.5 (s, 1 P, l-PCy2). 31P{1H}-NMR (CDCl3): ±4.4 (t,
1JPH = 311 Hz, 1 P, H2PCy); 118,4 (s, l-PCy2); aÈq-Isomer: 6.3 (d,
2JPP = 31 Hz, 1 P, H2PCy); 118.4 (d, JPP = 31 Hz, 1 P, l-PCy2); 31P{1H}-
2
NMR: ±6 (pseudo-t, 1 P, H2PCy) (Ûberlappung des Signals mit ax-Iso-
mer); 118.4 (s, 1 P, l-PCy2).
Kristallstrukturanalyse von 10
Reflexdaten wurden auf einem Bruker AXS P4-Diffrakto-
meter, x-Scan, mit MoKa-Strahlung und Graphitmonochro-
mator gesammelt. Wichtige kristallographische Daten sind in
Tabelle 1 aufgefuÈhrt. Drei periodisch gemessene Standard-
reflexe zeigten IntensitaÈtsverluste von 2%. Die Daten wur-
den LP-korrigiert, eine Absorptionskorrektur erfolgte uÈber
Psi-Scans. Insgesamt wurden 14776 Reflexe im Bereich
h = 2.3±27.0°, h = ±15/0, k = ±15/14, l = ±30/30 gesammelt, da-
von 14097 unabhaÈngige mit Rint = 0.038. StrukturloÈsung er-
folgte mit Direkten und konventionellen Fouriermethoden,
die Verfeinerung nach der Voll-Matrix Kleinste-Quadrate
Methode basierte auf F2 und 680 Parametern [16]. Nicht-
H-Atome wurden anisotrop verfeinert, H-Atome wurden
auf geometrisch berechneten Positionen mit einem ¹Reiter-
Modellª mit Uiso(H) = 1.2 UisoC verfeinert. Die Position des
l-H Atoms konnte nicht bestimmt werden. Einige diffuse
Restelektronendichten (LoÈsemittelpositionen) konnten nicht
erfolgreich zugeordnet werden.
Darstellung von
[MM'(AuPR3)2(l-H)(l-PCy)2(l4-PCy)(CO)6] (M = M' = Re,
R = Ph (2), Cy (3), Et (4); Mn, Ph (6), Et (8); M = Re,
M' = Mn, R = Ph (10), Et (11))
In einem ReaktionsgefaÈû aus Quarzglas wurden die Verbin-
dungen 1, 5 oder 9 (1 88,3 mg, 2 62,4 mg, 9 75,2 mg;
0.1 mmol); 30 lL (0.2 mmol) DBU (1.8-Diazabicyclo
[5.4.0]undec-7-en) und ClAuPR3 (R = Ph 98,3 mg; Cy 102,
6 mg; Et 70,1 mg; 0.2 mmol)) in 15 mL THF geloÈst. Nachfol-
gend wurden die ReaktionsloÈsungen mit einer UV-Lampe
(Heraeus, Modell TQ 15) bei 291 K bestrahlt, bis begleitende
m(CO)-IR-Messungen die Abwesenheit des zweikernigen
Edukts anzeigten. Die Produktabtrennung erfolgte mittels
TLC mit Dichlormethan/n-Hexan (1/1) als Eluat. Diese
chromatographischen Trennungen ergaben jeweils eine gelbe
Hauptfraktion, welche nach 31P-NMR-Daten mit der Aus-
nahme des zwei Verbindungen beinhaltenden Reaktions-
systems 5/ClAuPPh3 ein Produkt enthielt. Nach Entfernung
des LoÈsemittelgemischs unter Úlpumpenvakuum lagen die
Darstellung von [MM'(l-H)(l-PCy2)(CO)7(ax-H2PCy)]
(M = M' = Re(1), Mn(5); M = Re, M' = Mn (9))
folgenden Titelverbindungen vor:
2
(62 mg = 35%),
3
(76 mg = 42%), 4 (72 mg = 48%); 6 und 7 Produktmischung
(35 mg) trennbar durch fraktionierte Kristallisation in
CH2Cl2, 8 (31.7 mg = 26%), 10 (32.8 mg = 20%) und 11
(13.5 mg = 10%). Einkristalle von 2 und 4 wurden mit
CH2Cl2/n-Hexan nach der Dampfdruckausgleichsmethode
erhalten.
In einem typischen Experiment wurden jeweils die Verbin-
dung [MM'(l-H)(l-PCy2)(CO)8] (M = M', Re 159 mg;
Mn = 100 mg und M' = Re, Mn = Mn 125 mg; 0.189 mmol)
und 26 lL H2PCy2 (0.189 mmol) in 15 mL THF geloÈst. Diese
LoÈsung wurde auf 0 °C mit einem Eisbad gekuÈhlt und
0.189 mol (14,2 mg) Me3NO zugesetzt. Nach 2 h wurde das
Eisbad entfernt, wobei die vollstaÈndige Umsetzung der
Edukte durch begleitende m(CO)-IR-Messungen gesichert
wurde. Die Produktabtrennung erfolgte mittels TLC (PSC
Platte von 1 mm, silica 60, Fa. Merck) durch Verwendung
von Dichlormethan/n-Hexan (1/1) als Eluierungsmittel. Alle
chromatographischen Verfahren ergaben eine gelbe Haupt-
fraktion, welche nach Entfernung des LoÈsemittelgemischs
bei reduziertem Druck (Úlpumpenvakuum) zu den luftstabi-
len Produkten [Re2(l-H)(l-PCy2)(CO)7(ax-H2PCy)] (1:
Ausbeute 159 mg = 95%), [Mn2(l-H)(l-PCy2)(CO)7(ax-
H2PCy)] (5: 115 mg = 98%) und [MnRe(l-H)(l-PCy2)-
(CO)7(ax/aÈq-H2PCy)] (9: 130 mg = 92%) fuÈhrte.
2 (Mr = 1771.4). m(CO)-IR(CH2Cl2) (cm±1): 2002 vs, 1987 vs, 1907 s, 1882 s.
2
2
1H-NMR(CDCl3): ±11.77 (dd, JPH = 11.6 Hz, JPH = 17.6 Hz, 1 H, l-H),
0.9±2.1 (m, 33 H, Cy); 7.2±7.5 (m, 30 H, Ph). 31P-NMR (CDCl3: ±125.1 (t,
2JPP = 148 Hz, 1 P, l4-P); 38.2 (s, 1 P, l-PCy2); 47.8 (d, JPP = 148 Hz, 2 P,
2
2 AuPPh3).
3
(Mr = 1807.7). m(CO)-IR(CH2Cl2) (cm±1): 1997 s, 1974 vs, 1899 s,
2 2
1876 s. 1H-NMR (CDCl3): ±11.59 (dd, JPH = 11 Hz, JPH = 17 Hz, 1 H,
l-H); 0.84±2.2 (m, 99 H, Cy). 31P-NMR (CDCl3): ±132.9 (t, JPP = 149 Hz,
1 P, l4-P); 39.4 (s, 1 P, l-PCy2; 61.7 (d, JPP = 149 Hz, 2 P, 2 AuPCy3).
2
2
4
(Mr = 1483.1). m(CO)-IR(CH2Cl2) (cm±1): 1999 s, 1978 vs, 1905 s,
1878 s. 1H-NMR (CDCl3): ±12.02 (dd, JPH = 12 Hz, 2JP = 16 Hz, 1 H,
2
l-H); 0.88±2.2 (m, 63 H, Cy + Et).31P-NMR (CDCl3): ±116.1 (t,
2JPP = 150 Hz, 1 P, l4P); 38.2 (s, 1 P, l-PCy2); 46.1 (d, JPP = 150 Hz, 2 P,
2
2 AuPEt3).
6 (Mr = 1508.9). m(CO)-IR (CH2Cl2) (cm±1): 1986 vs, 1961 vs, 1903 s,
1878 s. 1H-NMR(CDCl3): ±12.6 (pseudo-t JPH = 31 Hz, 1 H, l-H); 0.62±2.2
1
C25H36O7P2Re2 (Mr = 882,91): m(CO)-IR(THF): 2085 m, 2017 vs,
2
1992 m, 1975 m, 1945 m, 1919 s. UV/VIS(CH2Cl)2: e (236 nm) =
(m, 33 H, Cy); 7.2±7.5 (m, 30 H, Ph). 31P-NMR (CDCl3): 8.4 (dd, JPP
2
2
3.28 ´ 106 L mol±1
,
cm±1
,
e (319 nm) = 0.54 ´ 106 L mol±1 cm±1
.
1H-NMR
(CDCl3): 8.4 (dd, JPP = 40 Hz, JP2P = 138 Hz, 1 P, l4-P); 44.5 (d,
2JPP = 138 Hz, 2 P, 2 AuPPh3); 155.2 (d, JPP = 40 Hz, 1 P, l-PCy2).
7 (Mr = 1967.1). 1H-NMR (CDCl3): 0.64±2.16 (m, 33 H, Cy); 7.23±7.76
(m, 30 H, Ph). 31P-NMR (CDCl3): l4-P-Signal nicht aufgeloÈst; 44.0 (d,
2
(CDCl3)(ppm): ±15.08 (pseudo-t; JP3H = 10.6 Hz, 1 H, l-H); 1.1±2.13 (m,
1
33 H, Cy); 3.89 (dd, JPH = 327 Hz, JPH = 3 Hz, 1 H, H2PCy), 3.95 (dd,
3
1JPH = 325 Hz, JPH = 3 Hz, 1 H, H2PCy). 31P-NMR (CDCl3)(ppm):
2
2
2
±70.2 (d, JPP = 23.7 Hz, 1 P, H2PCy); 55.8 (d, JPP = 23.7 Hz, 1 P,
2JPP2 = 133 Hz, 2 P, 2 AuPPh3); 56.7 (d, JPP = 19 Hz, 1 P, AuPPh3), 105.3
l-PCy2); 31P{1H}-NMR: ±70.2 (t, JPH = 325 Hz, 1 P, H2PCy); 55.8 (s, 1 P,
(d, JPP = 43 Hz, 1 P, l-P).
1
l-PCy2).
8 (Mr = 1220.6). m(CO)-IR (CH2Cl2) (cm±1): 1984 s, 1957 vs, 1899 s,
1880 s. 1H-NMR (CDCl3): ±12.9 (pseudo-t JPH = 31 Hz, 1 H, l-H; 0.4±2.1
5 C25H36O7P2Mn2 (Mr = 620.4) m(CO)-IR(CH2Cl2): 2066 m, 2014 m,
2
1975 vs, 1946 s, 1923 s. UV/VIS (CH2Cl2): e (353 nm = 2.48 ´ 106 L mol±1
´
(m, 63 H, Cy and Et). 31P-NMR CDCl3: ±2.3 (dd, JPP = 40 Hz,
Z. Anorg. Allg. Chem. 2000, 626, 2293±2298
2297